CLÉMENT CAMPILLO

CLÉMENT CAMPILLO

Maître de conférences HDR
Université d'Évry val d'Essonne

    Research

    My work aims to elucidate how the mechanical properties of living objects impact both normal and pathological biological processes. I collaborate with biologists to study living cells and work on reconstituted systems using model membranes and purified cytoskeletal components. Employing imaging and micro/nano-manipulation techniques, I explore the physical properties of these fragile, soft, and dynamic systems. My dual objective is to gain a fundamental understanding of the physical mechanisms underpinning biological functions and to develop therapeutic technologies, particularly in the context of cancer or Assisted Reproductive Technologies.

     

    Tools

    • Atomic Force Microscopy
    • Micropipette aspiration 
    • Reconstituted membranes and actin networks

    Cécile Sykes & Julie Plastino (ENS, Paris)

    Marie-Emilie Terret (CIRB, Collège de France, Paris)

    Elsa Labrune (HCL, Lyon)

    Encadrement

    15 stages L-M, 3 thèses soutenues, 3 thèses en cours, 1 postdoctorant, 1 ingénieur

     

    Thèses soutenues

    M. Liboz, (taux d’encadrement 100%), soutenance 12/07/22, sur l’utilisation de micropatrons adhésifs pour la mesure standardisée des propriétés mécaniques de cellules cancéreuses.

    Poste actuel : consultant en innovation scientifique chez ABF Décision (Tours).

    Publication [32]

    A. Allard (taux d’encadrement : 50%, C. Sykes 50%), soutenance 3/7/2020, sur l’effet de la dynamique du cytosquelette sur des nanotubes de membrane, prix de thèse C’Nano 2020, prix de thèse Groupe d’Étude des Membranes 2021.

    Poste actuel : MCF au LOMA (Bordeaux)

    Publications [21,23,24,25,28,29]

    F. Valentino (taux d’encadrement : 50%, C. Sykes 50%), soutenance 27/09/2016 sur la polymérisation d’actine sur des nanotubes de membrane

    Poste actuel : Scientifique chez Phasics (Orsay)

    Publications [20,21,25,28]

     

    Thèses en cours

    L. Huang, depuis octobre 2022, (taux d’encadrement 100%, financement du Chinese Science Council), sur le développement de circuits microfluidiques pour l’étude des vésicules géantes

    R. Bulteau, depuis octobre 2022, (co-encadrement 50% avec M-E Terret, financement de thèse FRM), sur la mécanique des ovocytes

    Publication [33]

    R. Lopes Dos Santos, depuis février 2019, (taux d’encadrement 100%), sur le remodelage de nanotubes de membrane par l’acto-myosine, soutenance prévue en 2023

    Publications [29,31]

     

    Encadrement de stages soutenus

    I. Diambessy, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2023, objectif : caractérisation d’un circuit microfluidique

    N. Parisot, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2023, objectif : nouvelles compositions de vésicules lipidiques hétérogènes

    V. Sivam, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2022, objectif : observation de vésicules lipidiques hétérogènes

    T. Gaignard, L2 Sciences & Technologie, Institut Villebon-Charpak, U. Paris-Saclay, stage de 4 semaines au LAMBE, juin 2021, objectif : préparation de GUVs à transitions de phase

    M. Foucat, L2 Chimie & Biologie, U. Paris-Saclay, stage de 3 mois au LAMBE, 2021, objectif : formation de nanotubes membranaires

    B. Sauvageot, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2021, objectif : observation de transitions de phases lipidiques

    L. Simon-Jean, L2 Sciences & Technologie, Institut Villebon-Charpak, U. Paris-Saclay, stage de 4 semaines au LAMBE, juin 2018, objectif : préparation de GUVs à transitions de phase

    M. Liboz, M2 MAVINNOV, U. Paris-Saclay, stage de 4 mois au LAMBE, avril – juillet 2018, objectif : mesures mécaniques par AFM sur cellules micropatternées

    T. Groux, M1 Chimie, UEVE, stage de 3 mois au LAMBE, avril 2017, objectif : greffage de nanotubes sur substrats fonctionnalisés

    S. Brahimi, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2017, objectif : agrégation de vésicules lipidiques géantes préparées par émulsion inverse

    W. Hao, L3 Physique UCBL/ Wuhan University (Chine), stage de 2 mois à l’ILM (Lyon), 2013, objectif : développement d’un programme d’analyse automatisé des expériences de micro-aspiration

    R. Pereira, M1 Physical Engineering of Health, Paris 5, stage de 2 mois à l’institut Curie, 2011, objectif : insertion de lipides bolaformes dans des vésicules lipidiques géantes

    G. Guiot, École Polytechnique, 1re année, stage de 3 mois à l’institut Curie, 2010, objectif : étudier l’étalement de vésicules encapsulant des milieux polymères

    L. Claverie, École Polytechnique, 1re année, stage de 3 mois à l’institut Curie, 2010, objectif : étudier l’étalement de vésicules encapsulant des milieux polymères

    F. Quémeneur, M2 Physique pour les sciences du vivant, UJF Grenoble, stage de 4 mois au Laboratoire de Spectrométrie Physique, 2005, objectif : développement de vésicules biomimétiques

     

    Autres

    L. Sauvetre, apprenti en alternance, Licence Professionnelle « Bioindustrie & Biotechnologies », Paris-Saclay, depuis septembre 2020.

    G. Lamour, postdoctorant depuis septembre 2016 (allocation de retour du Genopole, Evry), sur l’étude de nanotubes membranaires par AFM, Aujourd’hui IR au LAMBE

    R. Bulteau Co-encadrement avec M.E Terret (CIRB, Collège de France), IR 2020-2022 (projet “MicrOART”, Biomedical Engineering Seed Grant, Fondation Bettencourt Schueller), sur la mécanique des ovocytes sondée par AFM

    Intitulé

    Format

    Filière

    Etablissement

    Heures/an

    Année

    Biophysique cellulaire

    CM+TD

    Licence « Frontières du vivant », L3

    Paris Descartes

    12

    Depuis

    2016

    Transport transmembranaire

    CM+TD+TP Coordination UE

    L1 Biologie

    UEVE

    33

    Depuis 2015

    Physique pour la biologie

    TD+TP

    L1 Biologie

    UEVE

    30

    Depuis 2013

    Optique pour la biologie

    TD+TP

    L1 Biologie

    UEVE

    57

    2014

    Diffusion et Transport

    CM+TD+TP Coordination UE

    L3 Physique

    UEVE

    27

    2017

    Physique

    TD+TP

    L1 Physique

    UEVE

    30

    Depuis 2014

    Science des matériaux

    TP

    1re année IUT GMP

    UCBL Lyon

    32

    2012

    Projets de Physique Expérimentale

    CM+TPCoordination UE

    L2 Physique

    UEVE

    37

    Depuis 2014

    Lois de Conservation

    TD

    L1 Informatique

    UJF

    53

    2006

    Physique des Polymères

    TP

    M1 Chimie

    UJF

    15

    2005

    Biophysique et mimétisme cellulaire

    TP

    M1 Physique

    UJF

    8

    2005

    Mécanique cellulaire

    CM

    M2 Nanobiomaterials

    UEVE

    3

    2013

    Membrane biophysics

    CM

    M2 international Monabiphot

    ENS Cachan

    3

    Depuis 2014

    Cell mechanics

    CM+TD

    M1 Biologie

    U. Paris-Saclay

    6

    Depuis 2016

    Microscopie à Force Atomique

    CM+TD Coordination UE

    M1 Matériaux

    UEVE

    12

    Depuis 2014

    Articles in international peer-reviewed journals

     

    [36] Herardot, E.; Liboz, M.; Lamour, G.; Malo, M.; Plancheron, A.; Habeler, W.; Geiger, C.; Frank, E.; Campillo, C.; MonvilleC.* and Ben M’Barek, K.* « Biomechanical characterization of retinal pigment epitheliums derived from hPSCs using atomic force microscopy», submitted

    [35] Lamour, G.*; Malo, M.; Pelta, J.; Labdi, S.; Campillo, C. « Dynamically mapping the topography and stiffness of the leading edge of migrating cells using AFM in fast-QI mode », submitted

    [34] Bulteau, R.; Barbier, A.; Lamour, G.; Piolot, T.; Campillo, C.*; Terret, M-E.* « Atomic Force Microscopy for mechanical characterization of murine oocytes », in press

    [33] Lopes dos Santos, R.; Malo, M.; Campillo, C.* « Spatial control of Arp2/3-induced actin polymerization on phase-separated Giant Unilamellar Vesicles », ACS Synthetic Biology, 12, 11, 3267-3274, 2023

    [32] Liboz, M.; Allard, A.; Malo, M.; Lamour, G.; Letort, G.; Thiebot, B.; Labdi, S.; Pelta, J.; Campillo, C.* «Using adhesive micropatterns to assess cancer cell morphology and mechanics», ACS Applied Materials & Interfaces, 15 (37), 43403-43413, 2023

    [31] Lopes dos Santos, R.; Campillo, C.* «Studying actin polymerization with cell membrane mimics», Biochemical Society Transactions, 50 (5), 1527-1539, 2022

    [30] Lemseffer, Y.; Terret, M-E.; Campillo, C.; Labrune, E. «Methods for assessing oocyte quality : A review of literature», Biomedicines, 10,2184, 2022

    [29] Allard, A.; Lopes dos Santos, R.; Campillo, C.* «Remodeling of membrane tubes by the actin cytoskeleton: from in vivo to in vitro», Biology of the Cell, 113, 329-343, 2021

    [28] Allard, A.; Valentino, F.; SykesC.; Betz, T.; Campillo, C.* «Fluctuations of a membrane nanotube interacting with an actin network», Physical Review E, 102, 052402, 2020

    [27] Gat, S.; Simon, C.; Campillo, C.; Bernheim-Grosswasser, A.; SykesC. «Finger-like membrane protrusions are favored by heterogeneities in the actin network», Soft Matter, 16, 7222-7230, 2020

    [26] Bennabi, I; Crozet, F.; Chaigne, A.; Letort, G.; Manil-Segalen, M.; Campillo, C.; Cadart, C.; Othmani, A.; Attia, R.; Genovesio, A.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «Increase in myosin-II activity impairs chromosome capture in oocytes, generating misalignment»,Nature Communications, 11 1649, 2020

    [25] Allard, A.; Bouzid, M.; Betz, T.; Simon, C.; Abou-Ghali, M.; Lemière, J.; Valentino, F.; Manzi, J.; Brochard-Wyart, F.; Guevorkian, K.; Plastino, J.; Lenz, M.; Campillo, C.*; SykesC.* «Effect of an actin sleeve on a membrane nanotube», Science Advances, 6 (17), eeaz 3050, 2020

    [24] Lamour, G.; Allard, A.; Pelta, J.; Labdi, S.; Lenz, M.; Campillo, C.* « Mapping and modelling the nanomechanics of bare and protein-coated lipid nanotubes », Phys Rev X, 10, 011031, 2020

    [23] Simon, C.; Kusters, R.; Caorsi, V.; Allard, A.; Abou-Ghali, M.; Manzi, J.; Di Cicco, A.;  Lévy, D.; Lenz, M.; Joanny, J-F.; Campillo, C.; Plastino, J.; Sens, P.; SykesC. «Actin dynamics drive cell-like membrane deformations», Nature Physics, 15, 602-609, 2019

    [22] Simon, C.; Caorsi, V.; Campillo, C.; SykesC. «Interplay between membrane tension and the actin cytoskeleton determines shape changes», Physical Biology, 15, 065004, 2018

    [21] Valentino, F.; Sens, P.; Lemière, J.; Allard, A.; Betz, T.; Campillo, C.*; Sykes, C.* « Fluctuations of a membrane nanotube revealed by high resolution force measurements » Soft Matter, 12, 9429-9435, 2016

    [20] Lemière, J.; Valentino, F.; Campillo, C.; Sykes, C. « How cellular membranes are affected by the actin cytoskeleton», Biochimie, 130, 33-40, 2016

    [19] Smolyakov, G.; Thiebot, B.; Campillo, C.*; Labdi, S.; Severac, C.; Pelta, J.*; Dague, E.* «Elasticity, adhesion and nanotubes extrusion on breast cancer cells provide a signature of their invasive potential», ACS Applied Materials & Interfaces, 8 (41), 27426–27431, 2016

    [18] Caorsi, V.; Lemière, J.; Campillo, C.; Bussonnier, M.; Manzi, J.; Betz, T.; Plastino, J.; Carvalho, K.; Sykes, C. « Cell-sized liposome doublets reveal active cortical tension build up driven by acto-myosin dynamics» Soft Matter, 12, 6223-6231, 2016

    [17] Chaigne, A.; Campillo, C.; Sykes, C.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «F-actin mechanics operate the asymmetric to symmetric division switch at the oocyte to embryo transition» Nature Communications, 7 10253, 2016

    [16] Chaigne, A.; Campillo, C.; Gov, N.; Voituriez, R.; Sykes, C.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «A narrow window of cortical tension guides asymmetric spindle positioning in the mouse ovocyte» Nature Communications, 6 6027, 2015

    [15] Beckham, Y.; Vasquez, B.; Stricker, J.; Sayegh, K.; Campillo, C.; Gardel, M.L. «Arp 2/3 inhibition induces amoeboid-like protrusions in MCF10A epithelial cells by reducing cytoskeletal-membrane coupling and focal adhesion assembly» PLoS ONE, 9(6):e100943, 2014

    [14] Chaigne, A.; Campillo, C.; Gov, N.; Voituriez, R.; Azoury, J.; Umana, C.; Almonacid, M.; Nassoy, P.; Sykes, C.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «A soft cortex is essential for asymmetric spindle positioning in mouse oocytes» Nature Cell Biology, 15, 958-966, 2013

    [13] Campillo, C.*; Sens, P.; Pontani, L-L.; Lévy, D.; Bassereau, P.; Nassoy, P.*; Sykes, C.* «Unexpected membrane dynamics unveiled by membrane nanotube extrusion» Biophys. J., 104 (6), 1248-1256, 2013

    Accompanying « New & Notable » commentary : Wirtz, D. «Interstitial Friction Greatly Impacts Membrane Mechanics» Biophys. J., 104 (6), 1217–1218, 2013

    [12] Lemière, J.; Guevorkian, K.; Campillo, C.; Sykes, C.; Betz, T.  «a-hemolysin membrane pore density measured on liposomes» Soft Matter, 9, 3181-3187, 2013

    [11] Campillo, C.; Fisch, C.; Jerber, J.; Desforges, B.; Nassoy, P.; Dupuis-Williams, P.; Sykes, C. «Mechanics of membrane – cytoskeleton interaction in Paramecium» New Journal of Physics, 14: 125016, 2012

    [10] Pépin-Donat, B.; Campillo, C.; Quemeneur, F.; Rinaudo, M.; Marques, C.M.; Schroder, A.P.; Maret, G. «Lipidic composite vesicles based on poly(NIPAM), chitosan or hyaluronan : behaviour under stress», International Journal of Nano Dimension, 2 (1):17-23, 2011

    [9] Batchelder, E.; Hollopeter, G.; Campillo, C.; Mezanges, X.; Jorgensen, E.; Nassoy, P.; Plastino, J. «Cell tension and adhesion regulate motility and retrograde flow in crawling nematode sperm cells» PNAS, 108 (28) 11429-11434, 2011

    [8] Kremer, S.; Campillo, C.; Quemeneur, F.; Rinaudo, M.; Pépin-Donat, B. and Brochard-Wyart, F. «Nanotubes from asymmetrically decorated vesicles» Soft Matter, 7 (3), 946-951, 2011

    [7] Campillo, C.; Marques, C.M.; Schroder, A.P.; Pépin-Donat, B. «Composite gel-filled giant vesicles: membrane homogeneity and mechanical properties» Materials Science and Engineering C, 29, 393-397, 2009

    [6] Campillo, C.; Marques, C.M.; Schroder, A.P.; Pépin-Donat, B. «Volume transitions in composite poly(NIPAM) vesicles» Soft Matter, 4, 2486-2491 2008

    [5] Kremer, S.; Campillo, C.; Pépin-Donat, B.; Viallat, A.; Brochard-Wyart, F. «Nanotubes from gelly vesicles» Europhys. Lett., 82 (4) 48002, 2008

    [4] Campillo, C.; Pépin-Donat, B.; Viallat, A. «Responsive viscoelastic giant lipid vesicles filled with a poly(N-isopropylacrylamide) artificial cytoskeleton» Soft Matter, 3, 1421-1427, 2007

    [3] Faivre, M.; Campillo, C.; Pépin-Donat, B.; Viallat, A. «Responsive Giant Vesicles Filled with Poly(N-isopropylacrylamide) sols or gels» Progr. Colloid Polym. Sci, 133, 41-44, 2006.

     

    Book chapters

     

    [2] Pépin-Donat, B.; Quemeneur, F.; Campillo, C. «Lipid-lipid and lipid-polymer interactions: effect on GUVs shape and behavior»in «The Giant vesicle Book», edited by C. Marques and R. Dimova, 2019

    [1] Pépin-Donat, B.; Quemeneur, F.; Rinaudo, M.; Campillo, C. «Capsules based on lipid vesicles: potentiality for drug delivery», Advances in Nanoscience and Nanotechnology, Nanomedicine and Drug Delivery chapter 11, Apple Academic Press, 2012

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