CLÉMENT CAMPILLO
CLÉMENT CAMPILLO
Maître de conférences HDR
Université d'Évry val d'Essonne
Research
My work aims to elucidate how the mechanical properties of living objects impact both normal and pathological biological processes. I collaborate with biologists to study living cells and work on reconstituted systems using model membranes and purified cytoskeletal components. Employing imaging and micro/nano-manipulation techniques, I explore the physical properties of these fragile, soft, and dynamic systems. My dual objective is to gain a fundamental understanding of the physical mechanisms underpinning biological functions and to develop therapeutic technologies, particularly in the context of cancer or Assisted Reproductive Technologies.
Tools
- Atomic Force Microscopy
- Micropipette aspiration
- Reconstituted membranes and actin networks
Cécile Sykes & Julie Plastino (ENS, Paris)
Marie-Emilie Terret (CIRB, Collège de France, Paris)
Elsa Labrune (HCL, Lyon)
Encadrement
15 stages L-M, 3 thèses soutenues, 3 thèses en cours, 1 postdoctorant, 1 ingénieur
Thèses soutenues
M. Liboz, (taux d’encadrement 100%), soutenance 12/07/22, sur l’utilisation de micropatrons adhésifs pour la mesure standardisée des propriétés mécaniques de cellules cancéreuses.
Poste actuel : consultant en innovation scientifique chez ABF Décision (Tours).
Publication [32]
A. Allard (taux d’encadrement : 50%, C. Sykes 50%), soutenance 3/7/2020, sur l’effet de la dynamique du cytosquelette sur des nanotubes de membrane, prix de thèse C’Nano 2020, prix de thèse Groupe d’Étude des Membranes 2021.
Poste actuel : MCF au LOMA (Bordeaux)
Publications [21,23,24,25,28,29]
F. Valentino (taux d’encadrement : 50%, C. Sykes 50%), soutenance 27/09/2016 sur la polymérisation d’actine sur des nanotubes de membrane
Poste actuel : Scientifique chez Phasics (Orsay)
Publications [20,21,25,28]
Thèses en cours
L. Huang, depuis octobre 2022, (taux d’encadrement 100%, financement du Chinese Science Council), sur le développement de circuits microfluidiques pour l’étude des vésicules géantes
R. Bulteau, depuis octobre 2022, (co-encadrement 50% avec M-E Terret, financement de thèse FRM), sur la mécanique des ovocytes
Publication [33]
R. Lopes Dos Santos, depuis février 2019, (taux d’encadrement 100%), sur le remodelage de nanotubes de membrane par l’acto-myosine, soutenance prévue en 2023
Publications [29,31]
Encadrement de stages soutenus
I. Diambessy, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2023, objectif : caractérisation d’un circuit microfluidique
N. Parisot, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2023, objectif : nouvelles compositions de vésicules lipidiques hétérogènes
V. Sivam, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2022, objectif : observation de vésicules lipidiques hétérogènes
T. Gaignard, L2 Sciences & Technologie, Institut Villebon-Charpak, U. Paris-Saclay, stage de 4 semaines au LAMBE, juin 2021, objectif : préparation de GUVs à transitions de phase
M. Foucat, L2 Chimie & Biologie, U. Paris-Saclay, stage de 3 mois au LAMBE, 2021, objectif : formation de nanotubes membranaires
B. Sauvageot, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2021, objectif : observation de transitions de phases lipidiques
L. Simon-Jean, L2 Sciences & Technologie, Institut Villebon-Charpak, U. Paris-Saclay, stage de 4 semaines au LAMBE, juin 2018, objectif : préparation de GUVs à transitions de phase
M. Liboz, M2 MAVINNOV, U. Paris-Saclay, stage de 4 mois au LAMBE, avril – juillet 2018, objectif : mesures mécaniques par AFM sur cellules micropatternées
T. Groux, M1 Chimie, UEVE, stage de 3 mois au LAMBE, avril 2017, objectif : greffage de nanotubes sur substrats fonctionnalisés
S. Brahimi, L3 Chimie, UEVE, stage de 4 semaines au LAMBE, 2017, objectif : agrégation de vésicules lipidiques géantes préparées par émulsion inverse
W. Hao, L3 Physique UCBL/ Wuhan University (Chine), stage de 2 mois à l’ILM (Lyon), 2013, objectif : développement d’un programme d’analyse automatisé des expériences de micro-aspiration
R. Pereira, M1 Physical Engineering of Health, Paris 5, stage de 2 mois à l’institut Curie, 2011, objectif : insertion de lipides bolaformes dans des vésicules lipidiques géantes
G. Guiot, École Polytechnique, 1re année, stage de 3 mois à l’institut Curie, 2010, objectif : étudier l’étalement de vésicules encapsulant des milieux polymères
L. Claverie, École Polytechnique, 1re année, stage de 3 mois à l’institut Curie, 2010, objectif : étudier l’étalement de vésicules encapsulant des milieux polymères
F. Quémeneur, M2 Physique pour les sciences du vivant, UJF Grenoble, stage de 4 mois au Laboratoire de Spectrométrie Physique, 2005, objectif : développement de vésicules biomimétiques
L. Sauvetre, apprenti en alternance, Licence Professionnelle « Bioindustrie & Biotechnologies », Paris-Saclay, depuis septembre 2020.
G. Lamour, postdoctorant depuis septembre 2016 (allocation de retour du Genopole, Evry), sur l’étude de nanotubes membranaires par AFM, Aujourd’hui IR au LAMBE
R. Bulteau Co-encadrement avec M.E Terret (CIRB, Collège de France), IR 2020-2022 (projet “MicrOART”, Biomedical Engineering Seed Grant, Fondation Bettencourt Schueller), sur la mécanique des ovocytes sondée par AFM
Intitulé | Format | Filière | Etablissement | Heures/an | Année |
Biophysique cellulaire | CM+TD | Licence « Frontières du vivant », L3 | Paris Descartes | 12 | Depuis 2016 |
Transport transmembranaire | CM+TD+TP Coordination UE | L1 Biologie | UEVE | 33 | Depuis 2015 |
Physique pour la biologie | TD+TP | L1 Biologie | UEVE | 30 | Depuis 2013 |
Optique pour la biologie | TD+TP | L1 Biologie | UEVE | 57 | 2014 |
Diffusion et Transport | CM+TD+TP Coordination UE | L3 Physique | UEVE | 27 | 2017 |
Physique | TD+TP | L1 Physique | UEVE | 30 | Depuis 2014 |
Science des matériaux | TP | 1re année IUT GMP | UCBL Lyon | 32 | 2012 |
Projets de Physique Expérimentale | CM+TPCoordination UE | L2 Physique | UEVE | 37 | Depuis 2014 |
Lois de Conservation | TD | L1 Informatique | UJF | 53 | 2006 |
Physique des Polymères | TP | M1 Chimie | UJF | 15 | 2005 |
Biophysique et mimétisme cellulaire | TP | M1 Physique | UJF | 8 | 2005 |
Mécanique cellulaire | CM | M2 Nanobiomaterials | UEVE | 3 | 2013 |
Membrane biophysics | CM | M2 international Monabiphot | ENS Cachan | 3 | Depuis 2014 |
Cell mechanics | CM+TD | M1 Biologie | U. Paris-Saclay | 6 | Depuis 2016 |
Microscopie à Force Atomique | CM+TD Coordination UE | M1 Matériaux | UEVE | 12 | Depuis 2014 |
Articles in international peer-reviewed journals
[36] Herardot, E.; Liboz, M.; Lamour, G.; Malo, M.; Plancheron, A.; Habeler, W.; Geiger, C.; Frank, E.; Campillo, C.; Monville, C.* and Ben M’Barek, K.* « Biomechanical characterization of retinal pigment epitheliums derived from hPSCs using atomic force microscopy», submitted
[35] Lamour, G.*; Malo, M.; Pelta, J.; Labdi, S.; Campillo, C. « Dynamically mapping the topography and stiffness of the leading edge of migrating cells using AFM in fast-QI mode », submitted
[34] Bulteau, R.; Barbier, A.; Lamour, G.; Piolot, T.; Campillo, C.*; Terret, M-E.* « Atomic Force Microscopy for mechanical characterization of murine oocytes », in press
[33] Lopes dos Santos, R.; Malo, M.; Campillo, C.* « Spatial control of Arp2/3-induced actin polymerization on phase-separated Giant Unilamellar Vesicles », ACS Synthetic Biology, 12, 11, 3267-3274, 2023
[32] Liboz, M.; Allard, A.; Malo, M.; Lamour, G.; Letort, G.; Thiebot, B.; Labdi, S.; Pelta, J.; Campillo, C.* «Using adhesive micropatterns to assess cancer cell morphology and mechanics», ACS Applied Materials & Interfaces, 15 (37), 43403-43413, 2023
[31] Lopes dos Santos, R.; Campillo, C.* «Studying actin polymerization with cell membrane mimics», Biochemical Society Transactions, 50 (5), 1527-1539, 2022
[30] Lemseffer, Y.; Terret, M-E.; Campillo, C.; Labrune, E. «Methods for assessing oocyte quality : A review of literature», Biomedicines, 10,2184, 2022
[29] Allard, A.; Lopes dos Santos, R.; Campillo, C.* «Remodeling of membrane tubes by the actin cytoskeleton: from in vivo to in vitro», Biology of the Cell, 113, 329-343, 2021
[28] Allard, A.; Valentino, F.; Sykes, C.; Betz, T.; Campillo, C.* «Fluctuations of a membrane nanotube interacting with an actin network», Physical Review E, 102, 052402, 2020
[27] Gat, S.; Simon, C.; Campillo, C.; Bernheim-Grosswasser, A.; Sykes, C. «Finger-like membrane protrusions are favored by heterogeneities in the actin network», Soft Matter, 16, 7222-7230, 2020
[26] Bennabi, I; Crozet, F.; Chaigne, A.; Letort, G.; Manil-Segalen, M.; Campillo, C.; Cadart, C.; Othmani, A.; Attia, R.; Genovesio, A.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «Increase in myosin-II activity impairs chromosome capture in oocytes, generating misalignment»,Nature Communications, 11 1649, 2020
[25] Allard, A.; Bouzid, M.; Betz, T.; Simon, C.; Abou-Ghali, M.; Lemière, J.; Valentino, F.; Manzi, J.; Brochard-Wyart, F.; Guevorkian, K.; Plastino, J.; Lenz, M.; Campillo, C.*; Sykes, C.* «Effect of an actin sleeve on a membrane nanotube», Science Advances, 6 (17), eeaz 3050, 2020
[24] Lamour, G.; Allard, A.; Pelta, J.; Labdi, S.; Lenz, M.; Campillo, C.* « Mapping and modelling the nanomechanics of bare and protein-coated lipid nanotubes », Phys Rev X, 10, 011031, 2020
[23] Simon, C.; Kusters, R.; Caorsi, V.; Allard, A.; Abou-Ghali, M.; Manzi, J.; Di Cicco, A.; Lévy, D.; Lenz, M.; Joanny, J-F.; Campillo, C.; Plastino, J.; Sens, P.; Sykes, C. «Actin dynamics drive cell-like membrane deformations», Nature Physics, 15, 602-609, 2019
[22] Simon, C.; Caorsi, V.; Campillo, C.; Sykes, C. «Interplay between membrane tension and the actin cytoskeleton determines shape changes», Physical Biology, 15, 065004, 2018
[21] Valentino, F.; Sens, P.; Lemière, J.; Allard, A.; Betz, T.; Campillo, C.*; Sykes, C.* « Fluctuations of a membrane nanotube revealed by high resolution force measurements » Soft Matter, 12, 9429-9435, 2016
[20] Lemière, J.; Valentino, F.; Campillo, C.; Sykes, C. « How cellular membranes are affected by the actin cytoskeleton», Biochimie, 130, 33-40, 2016
[19] Smolyakov, G.; Thiebot, B.; Campillo, C.*; Labdi, S.; Severac, C.; Pelta, J.*; Dague, E.* «Elasticity, adhesion and nanotubes extrusion on breast cancer cells provide a signature of their invasive potential», ACS Applied Materials & Interfaces, 8 (41), 27426–27431, 2016
[18] Caorsi, V.; Lemière, J.; Campillo, C.; Bussonnier, M.; Manzi, J.; Betz, T.; Plastino, J.; Carvalho, K.; Sykes, C. « Cell-sized liposome doublets reveal active cortical tension build up driven by acto-myosin dynamics» Soft Matter, 12, 6223-6231, 2016
[17] Chaigne, A.; Campillo, C.; Sykes, C.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «F-actin mechanics operate the asymmetric to symmetric division switch at the oocyte to embryo transition» Nature Communications, 7 10253, 2016
[16] Chaigne, A.; Campillo, C.; Gov, N.; Voituriez, R.; Sykes, C.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «A narrow window of cortical tension guides asymmetric spindle positioning in the mouse ovocyte» Nature Communications, 6 6027, 2015
[15] Beckham, Y.; Vasquez, B.; Stricker, J.; Sayegh, K.; Campillo, C.; Gardel, M.L. «Arp 2/3 inhibition induces amoeboid-like protrusions in MCF10A epithelial cells by reducing cytoskeletal-membrane coupling and focal adhesion assembly» PLoS ONE, 9(6):e100943, 2014
[14] Chaigne, A.; Campillo, C.; Gov, N.; Voituriez, R.; Azoury, J.; Umana, C.; Almonacid, M.; Nassoy, P.; Sykes, C.; Verlhac, M-H.; Terret, M-E. «A soft cortex is essential for asymmetric spindle positioning in mouse oocytes» Nature Cell Biology, 15, 958-966, 2013
[13] Campillo, C.*; Sens, P.; Pontani, L-L.; Lévy, D.; Bassereau, P.; Nassoy, P.*; Sykes, C.* «Unexpected membrane dynamics unveiled by membrane nanotube extrusion» Biophys. J., 104 (6), 1248-1256, 2013
Accompanying « New & Notable » commentary : Wirtz, D. «Interstitial Friction Greatly Impacts Membrane Mechanics» Biophys. J., 104 (6), 1217–1218, 2013
[12] Lemière, J.; Guevorkian, K.; Campillo, C.; Sykes, C.; Betz, T. «a-hemolysin membrane pore density measured on liposomes» Soft Matter, 9, 3181-3187, 2013
[11] Campillo, C.; Fisch, C.; Jerber, J.; Desforges, B.; Nassoy, P.; Dupuis-Williams, P.; Sykes, C. «Mechanics of membrane – cytoskeleton interaction in Paramecium» New Journal of Physics, 14: 125016, 2012
[10] Pépin-Donat, B.; Campillo, C.; Quemeneur, F.; Rinaudo, M.; Marques, C.M.; Schroder, A.P.; Maret, G. «Lipidic composite vesicles based on poly(NIPAM), chitosan or hyaluronan : behaviour under stress», International Journal of Nano Dimension, 2 (1):17-23, 2011
[9] Batchelder, E.; Hollopeter, G.; Campillo, C.; Mezanges, X.; Jorgensen, E.; Nassoy, P.; Plastino, J. «Cell tension and adhesion regulate motility and retrograde flow in crawling nematode sperm cells» PNAS, 108 (28) 11429-11434, 2011
[8] Kremer, S.; Campillo, C.; Quemeneur, F.; Rinaudo, M.; Pépin-Donat, B. and Brochard-Wyart, F. «Nanotubes from asymmetrically decorated vesicles» Soft Matter, 7 (3), 946-951, 2011
[7] Campillo, C.; Marques, C.M.; Schroder, A.P.; Pépin-Donat, B. «Composite gel-filled giant vesicles: membrane homogeneity and mechanical properties» Materials Science and Engineering C, 29, 393-397, 2009
[6] Campillo, C.; Marques, C.M.; Schroder, A.P.; Pépin-Donat, B. «Volume transitions in composite poly(NIPAM) vesicles» Soft Matter, 4, 2486-2491 2008
[5] Kremer, S.; Campillo, C.; Pépin-Donat, B.; Viallat, A.; Brochard-Wyart, F. «Nanotubes from gelly vesicles» Europhys. Lett., 82 (4) 48002, 2008
[4] Campillo, C.; Pépin-Donat, B.; Viallat, A. «Responsive viscoelastic giant lipid vesicles filled with a poly(N-isopropylacrylamide) artificial cytoskeleton» Soft Matter, 3, 1421-1427, 2007
[3] Faivre, M.; Campillo, C.; Pépin-Donat, B.; Viallat, A. «Responsive Giant Vesicles Filled with Poly(N-isopropylacrylamide) sols or gels» Progr. Colloid Polym. Sci, 133, 41-44, 2006.
Book chapters
[2] Pépin-Donat, B.; Quemeneur, F.; Campillo, C. «Lipid-lipid and lipid-polymer interactions: effect on GUVs shape and behavior»in «The Giant vesicle Book», edited by C. Marques and R. Dimova, 2019
[1] Pépin-Donat, B.; Quemeneur, F.; Rinaudo, M.; Campillo, C. «Capsules based on lipid vesicles: potentiality for drug delivery», Advances in Nanoscience and Nanotechnology, Nanomedicine and Drug Delivery chapter 11, Apple Academic Press, 2012